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褪黑素与特发性脊柱侧凸

时间 : 2009-11-29 01:49:29 来源:www.bestkj.com

[摘要]

褪黑素与特发性脊柱侧凸妇产科,儿科,内科,外科,口腔,骨科,麻醉,中医,基础医学,临床技能,超生医学-2008年好课件医学免费资料


褪黑素与特发性脊柱侧凸
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朱泽章邱勇朱丽华王斌吕锦瑜俞杨

特发性脊柱侧凸最早是19世纪中叶由Bauer[1]提出,1909年Nathan[2]正式使用这一名称,直到1922年才由Whitman[3]给出明确定义,随后被国际脊柱侧凸研究会[4]推广。特发性脊柱侧凸在临床最为常见,约占全部脊柱侧凸的80%,好发于青少年。随着对特发性脊柱侧凸生物力学特征的进一步认识及内固定技术的完善,其外科治疗取得了飞快的发展和满意的疗效。但是特发性脊柱侧凸的发病机理仍然未明,文献报道其发生与遗传、生长发育不对称、结缔组织发育异常、神经--平衡系统功能障碍、内分泌系统异常有关。近年来,一些学者提出血清褪黑素(Melatonin)水平降低可能是发生特发性脊柱侧凸的重要始动因素,并与侧凸曲线的进展密切相关。

一、褪黑素的分泌节律

松果体是从第三脑室后顶部突出的小体,含有大量分泌细胞,一般都认为它是一种内分泌腺。1958年Lerner首先从松果体中提炼出褪黑素,该激素能使两栖动物皮肤内黑色素细胞颗粒聚集,从而使皮肤颜色变浅,故被命名。褪黑素化学结构为N-乙酰-5-甲羟色胺,是由色氨酸经4种酶催化后发生一系列反应所合成,具体合成途径为:色氨酸→5-羟色胺酸→5-羟色胺→N-乙酰-5-甲羟色胺→褪色素,其中5-羟色胺是一个重要的中介物质。在人类生命周期中褪黑素的分泌随年龄增长波动明显:出生后头三个月内,夜间血清褪黑素水平很低,因而24小时内几乎没有波动变化,此后夜间分泌逐渐增加,2岁前达到峰值,然后褪黑素水平稳步下降,成年时褪黑素分泌下降约80%[5]。每日褪黑素的分泌存在昼低夜高的规律,入睡后6-7小时为分泌高峰,这是因为5-羟色胺-N-乙酰转移酶和5-羟基吲哚-甲基转移酶是褪黑素合成所必须,而这两种酶在无光照时活性最高[6]。夜间褪黑素分泌可被强光抑制,人类对强度超过150-200lux的光敏感[7]。大约70%的褪黑素在肝脏代谢为6-羟褪黑素硫酸盐后从尿中排泄。目前褪黑素这种生理性差异及年龄依赖性分泌的机理尚不清楚。

二、特发性脊柱侧凸实验模型

Thillard[8]最先报道切除松果体的雏鸡脊柱侧凸发生率较高,Dubousset[9]和Machida等[10]切除雏鸡松果体后同样成功地获得了脊柱侧凸实验模型,这种侧凸畸形与人类特发性脊柱侧凸的解剖特征非常相似,表现为胸椎前突型侧凸,并伴有椎体旋转。在Machida[10]研究中,90只雏鸡随机均分为A、B、C三组,A组为正常对照组,B组雏鸡切除的松果体自体移植到躯干肌肉组织内,C组单纯行松果体切除,两周内发现C组所有雏鸡出现脊柱侧凸,随后5-6周内曲线持续进展,3个月时X线片示三维脊柱畸形,而B组中仅10%发生脊柱侧凸,A组没有一例发生。松果体切除本身并不导致神经损害,也不会直接破坏神经系统,而松果体最主要的功能是分泌褪黑素,Machida将松果体切除后所致的脊柱侧凸自然地归因于褪黑素的缺乏。随后Machida[11]比较性研究了褪黑素治疗对松果体切除后脊柱侧凸发生和发展的影响,结果表明脊柱侧凸的发生率仅为20%,而且畸形的严重程度明显较轻。而另外一些学者却得出了不同的结果。Wang等[12]报告33例切除松果体的雏鸡中,尽管所有雏鸡血清褪黑素水平均为O,但是只有17例(52%)发生脊柱侧凸,Bagnall等[13]发现松果体切除后雏鸡脊柱侧凸发生率为56%(50/89);生理治疗剂量(2.5mg/kg)褪黑素对松果体切除后脊柱畸形的发生或进展并无影响,因而褪黑素在雏鸡切除松果体后脊柱侧凸发生发展中的作用值得怀疑。Bagnall认为与Machida所报道结果不同的原因在于Machida是在光照期后期隔日注射2.5mg/100mg体重的褪黑素。首先,该剂量太高,而Barnall采用的褪黑素治疗剂量为2.5mg/kg体重,更接近雏鸡血清正常的褪黑素水平,可恢复褪黑素每日正常的昼夜分泌节律。Machida没有测量血清褪黑素水平,因此无法比较这两种剂量对脊柱侧凸治疗的影响。其次,有研究证实褪黑素经腹腔注射后很快进入血流中,但几小时后就全部排泄。Machida在光照期结束前几小时才注射褪黑素,这样血清褪黑素峰值出现在光照期结束时,但是正常血清褪黑素峰值应在黑暗期的中期出现。此外,褪黑素每日分泌节律是黑暗期达到最高,而在光照期最低,隔日注射并不能模拟出这种分泌节律,特别是经腹腔注射后几小时内褪黑素己经从血流中完全排泄。然而,这些治疗方法的差异导致截然相反结果的机制尚不明确。最近,Machida[14]用鼠代替雏鸡切除松果体来诱导脊柱侧凸的发生,因为鼠是哺乳动物,其种系发生与人类更接近。其研究表明脊柱侧凸发生在所有切除松果体后的两足鼠中,而作为对照组的正常两足鼠和切除松果体后的四足鼠中没有一例出现脊柱侧凸,Machida认为单纯切除松果体所致褪黑素缺乏并不能在四足动物中诱发脊柱侧凸,提示两足状态可能是影响脊柱侧凸发生的一个重要因素。

三、血清褪黑素水平

早在1983年,Dubousset等[9]就测定了30例特发性脊柱侧凸和15例年龄相当的健康对照组血清褪黑素水平,进展性脊柱侧凸中35%出现夜间褪黑素下降。1995年Machida[6]比较了15例正常青少年和12例进展性脊柱侧凸青少年血清褪黑素水平,发现后者24小时和夜间褪黑素明显降低。此外,他还发现持续进展的婴儿型特发性脊柱侧凸患儿的血清褪黑素显著下降,而在其它型侧凸,例如先天性脊柱侧凸的进展性病例中,血清褪黑素水平正常。在随后实验中,Machida证实具有稳定性侧凸曲线的青少年血清褪黑素并不低于健康对照组。基于以上结果,Machida认为如果是褪黑素缺乏导致特发性脊柱侧凸,那么稳定性脊柱侧凸患儿的血清褪黑素预计应仍然处于低水平,不会恢复正常,因此,褪黑素缺乏不应是特发性脊柱侧凸的病因,而应作为预测特发性脊柱侧凸进展的一个重要指标。Brodner[15]研究了24小时褪黑素分泌和16小时尿6-羟褪黑素硫酸盐排泄规律,结果显示特发性脊柱侧凸组与对照组中褪黑素和6-羟褪黑素硫酸盐并无统计学上显著差异,因而不支持血清褪黑素水平下降导致特发性脊柱侧凸发生这一观点。Bagnall[16]也报道在健康组和进展性特发性脊柱侧凸组中昼夜血清褪黑素并无差异,但是患儿褪黑素检测是在外科手术1.3年后进行的,因而无法评估侧凸曲线的发展过程在其中的影响作用。而且该组患儿年龄比曲线进展最快时年龄晚2~3年,并不是在生长高峰期检测。Hilibrand[17]分析早、晚尿样中褪黑素/肌酐比,不能证实9例特发性脊柱侧凸和18例对照组之间的差异,甚至在特发性脊柱侧凸组中尿褪黑素实际轻度升高。Fagan等[18]测定了24小时尿采集标本中6-羟褪黑素硫酸盐,发现19例非进展性脊柱侧凸和健康对照组间并无统计学差异。以上报道结果差异的原因,可能是依据单一血清测量或尿浓度分析,而不是整个排泄过程的检测,也没有考虑到一些重要的影响因素,如环境中光照强度等。此外,临床上某些病例证实褪黑素与特发性脊柱侧凸的发生并无明显相关性。比如在因松果体瘤而行松果体切除或松果体放疗过程中,尽管血清褪黑素缺乏,脊柱侧凸发生率并无明显提高[19-21]。Lowe[22]认为褪黑素下降可引起睡眠或免疫功能下降,但在特发性脊柱侧凸患者中没有发现这些异常。

四、褪黑素作用机制

许多研究表明中枢神经系统神经元中存在特异性的引起褪黑素效应的膜受体[23]。Wan和Peans[24]发现雏鸡褪黑素结合点位于脊髓背侧灰质,褪黑素在调节脊髓功能中发挥一定作用。他们推测褪黑素可能是通过脊髓结合点施加直接影响,这一点在兔脊髓灰质中得到证实。另外脊髓畸形,如脊髓空洞症,其病灶位于后柱和后角或前后角,常并发脊柱侧凸。然而,褪黑素引起的多重代谢和细胞反应提示该激素可能还通过其他机制发挥作用。Benitez-King和Antan-Tay[25]提出褪黑素和钙调蛋白相互作用学说,钙调蛋白是一种多功能的蛋白调节因子,褪黑素与钙调蛋白动态结合后即被激活。在用褪黑素培养的MDCK和N1E115细胞中,低浓度(10-9mol/l)褪黑素可拮抗Ca2+和钙调蛋白的结合,引起细胞骨架的改变,而高浓度(10-5mol/l)时褪黑素与细胞小管非特异性结合,可抑制特异性的对Ca2+钙调蛋白结合的拮抗作用。Bagnall等[16]提出褪黑素的作用是通过调节生长激素水平来完成,偶见报道在生长激素治疗的患者中出现侧凸曲线进展[26]。Allen[27]统计生长激素治疗的副反应中侧凸发生率低于1%。褪黑素可抑制5-羟色胺的释放和/或代谢,为5-羟色胺下丘脑受体结合点的阻断剂或者竟争性抑制剂,而和羟色胺可刺激生长激素分泌,因而褪黑素和5-羟色胺在生长激素分泌中作用正好相反。二者这种互相拮抗、互相协调的平衡关系可能是本体感和椎旁肌肉发育以及脊柱生长维持对称性所必须。当然,其具体生理作用机制仍有待进一步研究。

参考文献1.GoffCW.LouisBauer,Orthopaedistextraordinary.ClinOrthop,1956,8:3-6.2.NathanPW.TheetiologyOflateralcurvature.AmJOrthop,1909,6:3799-3903.WhitmanA.Observationonthecorrectiveandoperativetreatmentofstructuralscoliosis.ArchSurg,1922,5:578-6304.GoldsteinLA,WaughTR.Classificationandterminologyofscoliosis.ClinOrthop,1973,93:10-225.WaldhauserF,WeiszenbacherG,TatzerE,etal.Alterationinnocturnalserummelatoninlevelsinwithgrowthandageing.JClinEndocrinolMetab,1988,66:648-526.MachidaM,DuboussetJ,Imamura,etal.Melatonin:Apossibleroleinpathogenesisofadolescentidiopathicscoliosis.Spine,1996,21:1147-527.McIntyreIM,NormalTR,BurrowsGD,etal.Humanmelatoninsuppressionbylightisintensitydependent.JPinealRes,1989,6:149-568,ThillardMJ.Deformationsdelacolonnevertebraleconsecutivesal'epiphysectomiechezlepossin.ExtratdescomptesRendusdel'associationdesanatomistes,1959,751-89.DuboussetJ,QueneauP,ThillardMJ.Experimentalscoliosisinducedbypinealanddiencephaliclesionsinyoungchickens:Itsrelationwithclinicalfindings.OrthopTrans,1983,7:710.MachidaM,DuboussetJ,ImamuraY,etal.Anexpermentalstudyinchickensforthepathogenesisofidiopathicscoliosis.Spine,1993,18;1609-1511.MachidaM,DuboussetJ,ImamuraY,etal.Roleofmelatonindeficiencyinthedevelopmentofscoliosisinpinealectomizedchickens.JBoneJointSurg[Br],1995,77:134-812.WangX,MoreauM,RasoVJ,etal.Changesinserummelatoninlevelsinresponsetopinealectomyinthechicken:itsrelationtothedevelopmentofscoliosis.Spine,1998,23:2377-8113.BagnallK,RasoVJ,MoreauM,etal.Theeffectsofmelatonintherapyonthedevelopmentofscoliosisafterpinealectomyinthechicken.JBoheJSurg[Am],1999,81(2)191-914.MachidaM,MuraiL,MiyathitaY,etal.Pathogenesisofidiopathicscoliosis.Spine,1999,24(19):1985-915.BronderW,KreplerP,NicolakisM,etal.Melatoninandadolescentidiopathicscoliosis.JBoneJSurg[Br],82(3):399-40316.BagnallK,RasoVJ,HillDL,etal.Melatoninlevelsinidiopathicscoliosis:diurnalandnocturnalserummelatoninlevelsingirlswithadolescentidiopathicscoliosis.Spine,1996,21;1974-817.HilibrandAS,BlakmoreLC,LoderRT,etal.Theroleofmelatonininthepathogenesisofadolescentidiopathicscoliosis.Spine,1996,21;1140-618.FaganAB,KennawayDJ,SutherlandAD.Total24-hourmelatoninsecretioninadolescentidiopathicscoliosis.Spine,1998,23:41-619.VorkapicP,WaldhauserF,BrucknerR,etal.Serummelatoninlevels:anewneurodiagnostictoolinpubertyregionitumors?Neurosurgery,l987,21:817-2420.EtzioniA,LuboshitzkyR,TiosanoD,etal.Melatoninreplacementcorrectssleepdisturbancesinachildwithpinealtumor.Neurology,1996,46:261-321.MurataJ,SawamuraY,IkedaJ,etal.Twenty-fourhourrhythmofmelatonininpatientswithahistorypinealand/orhypothalamo-neurohypophysealgerminoma.JPinealRes,1998,25:159-6622.LoweTG,MchirME,MarguliesJY,etal.Etiologyofadolescentidiopathicscoliosis:Currenttrendsinresearch.JBoneJSurg[Am],2000,82(8):1157-6823.MichidaM.Causeofidiopathicscoliosis.Spine,2000,24(24):2576-8324.WanQ,PangSF.Segmental,coronal,andsubcellulardistributionof2-[125I]iodomelatoninbindingsitesinthechickenspinalcord.NeurosciLett,1994,180:253-625.Benitez-KingG,Anton-TayF.Calmodulinmediatesmelatonincytoskeletaleffects.Experientia,1993,49:635-4126.MachidaM,IwahashiM,etal.ProgressionofastructuralscoliosisduringadminstrationofgrowthhormoneinTurner'ssyndromeSeikeigeka,1995,46:847-5027.AllenDB.Safetyofhumangrowthhormonetherapy;currenttopics.JPediat,l996,128s:8-13

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